Вода стелс магний: Вода минеральная Стэлмас Магний 1л (газ) купить в Москве по цене от 72 рублей

Анализ воды | Филиал ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в городе Москве» в ЗАО г. Москвы

Анализ воды по санитарно-химическим и микробиологическим показателям проводится в ИЛЦ филиала по адресу:
ул. Вересаева, дом 15.

Консультации:
(495) 443-14-19, (495) 443-78-18 – санитарно-гигиеническая лаборатория
(495) 443-14-18, (495) 443-49-04 – микробиологическая лаборатория

Анализ воды позволяет узнать качество воды, удостовериться в чистоте воды и пригодности воды для питья, умывания, ежедневного применения, эксплуатации бытовой техники и сантехники.

Прием образцов (проб) на лабораторные исследования осуществляется только после предоплаты работ, либо при наличии гарантийного письма.
В лабораториях филиала анализ воды проводится по основным показателям:

Санитарно-гигиенические показатели

№ п/пНаименование показателя
Холодная вода централизованного водоснабжения:
1.Органолептика:запах, привкус
2.Цветность
3.Мутность по формазину
4.Водородный показатель
5.Окисляемость пермангантаная
6.Аммиак и ионы аммония (суммарно)
7.Нитриты
8.Железо общее
9.Хлор остаточный связанный
10.Хлороформ(трихлометан)
11.Бромоформ(трибромметан)
12.Четыреххлористый углерож(тетрахлорметан)
13.Дибромхлорметан
14.Дихлорбромметан
15.Алюминий
16.Хром общий
17.Цветность
18.Свинец
19.Мышьяк
Горячая вода централизованного водоснабжения:
21.Органолептика:запах, привкус
22.Цветность
23.Мутность по Формазину
24.Водородный показатель
25.Железо общее
26.Алюминий
27.Полифосфаты
28.Хром общий
29.Кадмий
30.Свинец
31.Мышьяк
32.Никель
33.Цинк
34.Сероводород
35.Хлороформ( трихлометан)
Вода централизованного водоснабжения(родники, колодцы, артскважины):
1.Органолептика:запах, привкус
2.Цветность
3.Мутность по формазину
4.Водородный показатель
5.Окисляемость пермангантаная
6.Аммиак и ионы аммония (суммарно)
7.Нитриты
8.Нитраты
9.Железо общее
10.Фториды
11.Сульфаты
12.Хлориды
13.Фосфаты
14.Сероводород и сульфиды
15.Марганец
16.Стронций
Вода, расфасованная в емкости, вода из кулера:
1.Органолептика:запах, привкус
2.Цветность
3.Мутность по формазину
4.Водородный показатель
5.Общая минерализация(сухой остаток)
6.Жесткость общая
7.Щелочность общая
8.Фториды
9.Нитраты
10.Хлориды
11.Сульфаты
12.Гидрокорбонаты
13.Окисляемость пермангантаная
14.Мышьяк
15.Свинец
16.Кадмий
17.Калий
18.Натрий
19.Кальций
20.Магний
21.Серебро
Вода бассейнов:
1.Запах
2.Мутность по формазину
3.Цветность
4.Хлориды
5.Остаточный свободный хлор
6.Связанный хлор
7.Остаточный общий хлор
8.Хлороформ
9.Формальдегид
10.Водородный показатель (pH)
11.Азот аммонийный
12.Перманганатная окисляемость
Вода открытых водоёмов:
1.Органолептика:запах, окраска, плавающие примеси
2.Растворённый кислород
3.Взвешенные вещества
4.Сухой остаток
5.Водородный показатель
6.БПК 5
7.ХПК
8.Аммиак и ионы аммония(суммарно)
9.Нитриты
10.Нитраты
11.Хлориды
12.Сульфаты
13.Нефтепродукты
14.АПАВ(аниоктивные поверхностные вещества)
15.Кадмий
16.Хром общий
17.Никель
18.Свинец
19.Медь
20.Цинк
Сточна вода ливнестоков:
1.Органолептика:запах,прозрачность, цвет, муть, осадок
2.Взвешенные вещества
3.Сухой остаток
4.Водородный показатель
5.БПК5
6.ХПК
7.Аммиак и ионы аммония(суммарно)
8.Нитриты
9.Нитраты
10.Хлориды
11.Сульфаты
12.Железо общее
13.Нефтепродукты
14.АПАВ(аниоктивные поверхностные вещества)
15.Сероводород и сульфиды
16.Кадмий
17.Хром общий
18.Никель
19.Свинец
20.Медь
21.Цинк
Техническая вода(оборотная вода на автомойке):
1.БПК5
2.ХПК
3.Нефтепродукты
4.Взвешенные вещества
5.Водородный показатель
Вода дистиллированная:
1.Остаток после выпаривания
2.Аммиак и аммонийные соли
3.Нитраты
4.Сульфаты
5.Хлориды
6.Железо
7.Кальций
8.Медь
9.Свинец
10.Цинк
11.Вещества, восстаналивающие KMnO4
12.pH
13.Удельная электрическая проводимость

Микробиологические показатели

№ п/пНаименование показателя
2.0Вода
2.1.Вода систем централизованного питьевого водоснабжения, в т.ч. горячего водоснабжения:
2. 1.1Общее микробное число
2.1.2Общие колиформные бактерии, Термотолернатные колиформные бактерии
2.1.3.E.Coli
2.1.4.Энтрерококки
2.1.5.Колифаги
Дополнительные исследования:
2.1.6Возбудители кишечных инфекций
2.1.7.Pseudomonas aeruginosa
2.1.8.Legionella pneumophila
2.2Вода открытых водоёмов, сточная:
2.2.1Общие колиформные бактерии, Термотолернатные колиформные бактерии
2.2.2Коли-фаги(без обогащения)
2.2.3.E.Coli
2.2.4.Энтерококки
2.2.5.Возбудители кишечных инфекций(Salmonella spp. )
2.3.Вода плавательных бассейнов:
2.3.1Общие колиформные бактерии, Термотолернатные колиформные бактерии
2.3.2.Патогенный стафилококк(S.aureus)
2.3.3.Коли -фаги(с обогащением)
2.3.4.E.Coli
2.3.5.Энтрерококки
2.3.6.Pseudomonas aeruginosa
Дополнительные исследования:
2.3.7.Возбудители кишечных инфекций
2.3.8.Legionella pneumophila
2.3.9.Candida albicans
2.4.Санитарно-паразитологические исследования:
2.4.1.Исследование питьевой воды, плавательных бассейнов на яйца, личинки гельминтов и цисты лямблий
2. 4.2.Исследование воды открытых водоёмов на яйца гельминтов, цисты патогенных кишечных простейших
2.4.3.Исследование питьевой воды расфасованной в емкости на яйца гельминтов, цисты лямблий и ооцисты криптоспоридий
2.4.4.Исследование сточной воды на яйца гельминтов и цисты кишечных простейших
2.4.5.Исследование донных отложений и осадка сточных вод на яйца гельминтов и цисты кишечных простейших
2.5Исследование на особо-опасные инфекции:
2.5.1.Вода открытых водоёмов, сточная вода на холеру
2.5.2.Вода централизованного водоснабжения, в том числе горячая на легионеллез – бактериол, метод


Сдать тест ПЦР на коронавирус Covid-19 в Минеральных Водах

Метод определения

ПЦР с детекцией в режиме реального времени.

Тест-система «Вектор-Бест», Россия.

Определение РНК вируса SARS-CoV-2 (все виды известных штаммов, включая Дельта, Омикрон и его вариант «Стелс-омикрон»)

Исследуемый материал
Мазок со слизистой носоглотки и/или ротоглотки

Стоимость взятия биоматериала уточняйте в медицинском офисе

Для проведения исследования в медицинских офисах необходимо предъявить СНИЛС и документ удостоверяющий личность.


В случае получения положительного или сомнительного результата на COVID-19 и при необходимости проведения подтверждающего тестирования образец биоматериала может быть направлен в уполномоченную референс-лабораторию в соответствии с СП 3.1.3597-20, в связи с чем установленный срок выполнения исследования может быть увеличен.


Синонимы: Ковид-19; Новая коронавирусная инфекция; РНК нового коронавируса; РНК SARS-CoV-2 в мазке со слизистой носоглотки и/или ротоглотки.  


Comprehensive laboratory diagnosis of coronavirus COVID-19; New Coronavirus RNA in nasopharyngeal and/or oropharyngeal smear.

Краткая информация об инфекции, вызываемой вирусом SARS-CoV-2 (COVID-19) 


SARS-CoV-2 относится к большому семейству РНК-содержащих вирусов – коронавирусов (лат. Coronaviridae), вызывающих респираторные заболевания. В настоящее время известно о циркуляции среди населения четырех видов коронавирусов (HCoV-229E, -OC43, -NL63 и -HKU1), которые круглогодично присутствуют в структуре ОРВИ и, как правило, вызывают поражение верхних дыхательных путей легкой и средней тяжести. К семейству коронавирусов также относятся опасные вирусы SARS-CoV и MERS-CoV, вызывающие тяжелый острый респираторный синдром и ближневосточный респираторный синдром, соответственно. 


Основным источником при инфицировании вирусом SARS-CoV-2 является больной человек, в том числе находящийся в инкубационном периоде заболевания. В настоящее время считается, что инфекция передается воздушно-капельным (при кашле, чихании, разговоре), воздушно-пылевым и контактным путями. При этом факторами передачи могут быть воздух, пищевые продукты и предметы обихода, контаминированные SARS-CoV-2. 


Инкубационный период составляет от 2 до 14 суток. 


У большинства людей (до 80% случаев) инфекция протекает бессимптомно или в легкой форме, у 10-15% – в среднетяжелой форме, крайне тяжелое течение отмечается у 2-5% инфицированных. 


Диагноз заболевания, которому присвоено название COVID-19 и причиной которого является вирус SARS-CoV-2, устанавливается на основании клинического обследования, данных эпидемиологического анамнеза и результатов лабораторных исследований. 


Для заболевания характерно наличие клинических проявлений острой респираторной вирусной инфекции. Основными симптомами являются повышение температуры, кашель сухой или с небольшим количеством мокроты, одышка, миалгия и утомление, ощущение заложенности в грудной клетке. На раннем этапе заболевания COVID-19 возможны диарея, тошнота, рвота. Различают легкую, среднюю и тяжелую формы инфекции SARS-CoV-2. Тяжелая форма заболевания протекает как пневмония с острой дыхательной недостаточностью, острый респираторный дистресс-синдром (ОРДС), сепсис. 


Тестирование методом ПЦР в режиме реального времени применяют для специфической лабораторной диагностики, подтверждающей инфекцию SARS-CoV-2.

Аналитические характеристики теста ПЦР на «Коронавирус SARS-CoV-2, определение РНК, кач., в мазке со слизистой носоглотки и/или ротоглотки» 


Аналитическая чувствительность 


1×103 копий/мл исходного образца. 


Аналитическая специфичность 


Перекрестных реакций с вирусами (грипп А и В, парагрипп, аденовирусная инфекция, респираторно-синцитиальная инфекция, метапневмовирусная инфекция, риновирусная инфекция и коронавирусная инфекция человека, вызванная HCoV-NL63, HCoV-OC43, HCoV-229E, HCoV-HKU1) и микроорганизмами (Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus) не обнаружено.

POWER OF STEALTH — Stealth

В МАЕ 2014 произошел наш первый крупный прорыв в нашей ТЕХНОЛОГИИ STEALTH. После бесчисленных попыток и множества неудач мы создали самый мощный в мире антиоксидант в настоящий момент «Назад в будущее». Цепочка сгруппированных молекул воды была создана с помощью — или + колебаний потенциала восстановления кислорода и (корпоративная тайна) использования недавно разработанных прикладных наук. Эта технология формировала глубокие скопления молекул воды за счет отрицательных колебаний ОВП. Потенциальная энергия, генерируемая манипуляциями в мВ, увеличивала молекулярные уровни в более высоких плотностях, наполняя их активными кислородными связующими связями.

Хотите знать, как это работает?

Этап 1: Очистка

ПОЛОСА

Фильтрация STEALTH не имеет себе равных. Из-за загрязнения воды из муниципальных источников для борьбы с токсичностью водопроводной воды требуются как минимум 2-ступенчатые фильтры. STEALTH использует 3-ступенчатую фильтрацию. Используя 3 суперфильтра, мы удаляем все следы химических веществ, тяжелых металлов, микропластика и токсинов. Эти токсины включают хлор, хлорамин, щелочь, фтор, гербициды, свинец, ртуть, метил-трет-бутиловый эфир, нитраты, перхлораты, фармацевтические препараты и многое другое!

BYPASS

Что отличает STEALTH Filtration от других, так это то, что, отфильтровывая загрязняющие вещества, он одновременно позволяет естественным полезным исходным минералам проходить и оставаться в воде в органическом виде. Некоторыми из этих минералов являются магний, калий и кальций, которые связаны со многими доказанными преимуществами для здоровья. После этого шага STEALTH становится на 100% органическим; таким, каким его задумала природа. STEALTH Вода не содержит химикатов, консервантов и токсинов. Тело может поглощать воду и минералы STEALTH с гораздо большей скоростью.

Шаг 2: Реконструкция

ГИДРАТАЦИЯ СОВЕРШЕННО

Чистая, отфильтрованная СТЕЛС-ВОДА затем поступает в электрически заряженные камеры платиновых и титановых пластин. Вот где происходит волшебство! Мы продолжаем удалять даже невидимые, нефильтруемые загрязнители воды, используя милливольты электричества, чтобы нейтрализовать их. Мы создаем линию сброса воды, чтобы устранить неприятные вещества, и линию воды высокой плотности, наполненную активным водородом с глубокими кластерами.

С НАГНЕТАТЕЛЕМ

Открывая этот запатентованный последний шаг, мы обнаружили самый мощный в мире антиоксидант. Молекулы воды конденсируются и сгруппированы, поэтому они быстрее проникают в ваши клетки. Каждый стакан STEALTH WATER содержит миллионы антивозрастных антиоксидантов, которые нейтрализуют вредные свободные радикалы. STEALTH WATER выводит из организма вредные токсины, кислоты и отходы. Почему бы не заправить свое тело лучшим топливом?

STEALTH Исследования показали…

Насколько эффективна STEALTH DETOX WATER? Загрузите наше исследование контролируемого курения, чтобы увидеть, как STEALTH удаляет никотин, котинин и ТГК из человеческого организма во время курения в прямом эфире. Вы будете потрясены силой STEALTH WATER. Удаление токсинов с такой скоростью никогда не регистрировалось с научной точки зрения до этого исследования. Пейте STEALTH WATER и ничего больше для достижения непревзойденных результатов

Что делает STEALTH лучшим?

Магнитолипосомы Stealth на основе замещенных кальцием наночастиц феррита магния для транспортировки и высвобождения куркумина

1. Гоэл А., Куннумаккара А.Б., Аггарвал Б.Б. Куркумин как «лекарство»: от кухни до клиники. Биохим. фарм. 2008; 75: 787–809. doi: 10.1016/j.bcp.2007.08.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Рингман Дж. М., Фраучи С. А., Коул Г. М., Мастерман Д. Л., Каммингс Дж. Л. Потенциальная роль куркумина из специй карри при болезни Альцгеймера. Курс. Альцгеймер Res. 2005;2:131–136. doi: 10.2174/1567205053585882. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Махешвари Р.К., Сингх А.К., Гаддипати Дж., Шримал Р.К. Множественная биологическая активность куркумина: краткий обзор. Жизнь наук. 2006; 78: 2081–2087. doi: 10.1016/j.lfs.2005.12.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Trujillo J., Chirino Y.I., Molina-Jijón E., Andérica-Romero A.C., Tapia E., Pedraza-Chaverrí J. Ренопротекторный эффект антиоксиданта куркумина: недавние результаты . Редокс Биол. 2013; 1: 448–456. doi: 10.1016/j.redox.2013.09.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. Ответное письмо агентства Уведомление GRAS № Grn 000460. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США; White Oak, MD, USA: 2013. [Google Scholar]

6. Heger M., van Golen R.F., Broekgaarden M., Michel M.C. Молекулярная основа фармакокинетики и фармакодинамики куркумина и его метаболитов в отношении рака. фарм. 2013; 66: 222–307. doi: 10.1124/пр.110.004044. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

7. Куриен Б.Т., Сингх А., Мацумото Х., Скофилд Р.Х. Повышение растворимости и фармакологической эффективности куркумина путем термической обработки. Анализ наркотиков Dev. Технол. 2007; 5: 567–576. doi: 10.1089/adt.2007.064. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Liang G., Shao L., Wang Y., Zhao C., Chu Y., Xiao J., Zhao Y., Li X., Yang S. Exploration и синтез аналогов куркумина с улучшенной структурной стабильностью как in vitro, так и in vivo в качестве цитотоксических агентов. биоорг. Мед. хим. 2009;17:2623–2631. doi: 10.1016/j.bmc.2008.10.044. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

9. Danhier F., Feron O., Préat V. Использование микроокружения опухоли: пассивное и активное нацеливание на опухоль наноносителей для доставки противоопухолевых препаратов. Дж. Контроль. отн. 2010; 148:135–146. doi: 10.1016/j.jconrel.2010.08.027. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Савант Р.Р., Торчилин В.П. Проблемы разработки таргетной липосомальной терапии. Аапс Дж. 2012; 14:303–315. doi: 10.1208/s12248-012-9330-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Жьер Р. Магнетит в организме человека. ПНАС. 2016;113:11986–11987. doi: 10.1073/pnas.1613349113. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Ван З.Л., Лю Ю., Чжан З. Справочник по нанофазным и наноструктурным материалам. Том 3 Kluwer Academic/Plenum; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 2003. [Google Scholar]

13. Шарма Р., Такур П., Шарма П. Mn 2+ ферритовые наночастицы, легированные Mg-Zn, для применения в микроволновых устройствах. IEEE Electron Device Lett. 2018;39: 901–904. doi: 10.1109/LED.2018.2829926. [CrossRef] [Google Scholar]

14. Амария С.Н., Долиа А.С., Прасад П.К., Шарма С.П., Парик М.С., Кумар Д.С. Структурное и магнитное поведение CaFe 2 O 4 в зависимости от размера. Курс. заявл. физ. 2013; 13:830–835. doi: 10.1016/j.cap.2012.12.009. [CrossRef] [Google Scholar]

15. Сальдивар-Рамирес М.М.Г., Санчес-Торрес К.Г., Кортес-Эрнандес Д.А., Эскобедо-Бокардо Х.К., Альманса-Роблес Х.М., Ларсон А., Резендиз-Эрнандес П.Дж., Акуна И.О.Гутьерр. Исследование эффективности наноразмерного магнетита и смешанных ферритов в магнитной гипертермии. Дж. Матер. науч. Матер. Электрон. 2014;25:2229–2236. doi: 10.1007/s10856-014-5187-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Шепелак В., Баабе Д., Минерт Д., Литтерст Ф.Дж., Беккер К.Д. Повышенная намагниченность в нанокристаллическом высокоэнергетическом измельченном MgFe 2 O 4 . Скр. Матер. 2003; 48: 961–966. doi: 10.1016/S1359-6462(02)00600-0. [CrossRef] [Google Scholar]

17. Гисмелсид А.М., Мохаммед К.А., Видаталла Х.М., Аль-Равас А.Д., Эльзаин М.Е., Юсиф А.А. Структура и магнитные свойства Zn x Mg 1-x Fe 2 O 4 ферриты. Дж. Физ. конф. сер. 2010;217:012138. doi: 10.1088/1742-6596/217/1/012138. [CrossRef] [Google Scholar]

18. Мазен С.А., Мансур С.Ф., Заки Х.М. Некоторые физические и магнитные свойства феррита Mg-Zn. Кристалл. Рез. Технол. 2003; 38: 471–478. doi: 10.1002/crat.200310059. [CrossRef] [Google Scholar]

19. Van Nong H., Hung L.X., Thang P.N., Chinh V.D., Vu L.V., Dung P.T., Van Trung T., Nga P.T. Изготовление и вибрационная характеристика куркумина, извлеченного из корневищ куркумы (Curcuma longa) северного Вьетнама. Спрингерплюс. 2016;22:1147. doi: 10.1186/s40064-016-2812-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Барик К.С., Экта Э., Гавали С.Л., Саркар А., Кунвар А., Приядарсини К.Л., Хассан П.А. Плюроник стабилизированный Fe 3 O 4 магнитные наночастицы для внутриклеточной доставки куркумина. RSC Adv. 2016;6:98674–98681. doi: 10.1039/C6RA21207G. [CrossRef] [Google Scholar]

21. Приядарсини К.И. Фотофизика, фотохимия и фотобиология куркумина: исследования органических растворов, биомиметиков и живых клеток. Дж. Фотохим. Фотобиол. C Фотохим. Версия 2009 г.;10:81–95. doi: 10.1016/j.jphotochemrev.2009.05.001. [CrossRef] [Google Scholar]

22. Cardoso B.D., Rio ISR, Rodrigues A.R.O., Fernandes FCT, Almeida B.G., Pires A., Pereira A.M., Araujo J.P., Castanheira E.M.S., Coutinho PJG. Магнитолипосомы, содержащие наночастицы феррита магния, в качестве наноносителей для модельного препарата куркумина. Р. Соц. Открытая наука. 2018;5:181017. doi: 10.1098/rsos.181017. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Jasim F., Ali. F. Новый и быстрый метод спектрофлуориметрического определения куркумина в куркуминовых специях и ароматизаторах. Микрохим. Дж. 1988;38:106–110. doi: 10.1016/0026-265X(88)

-2. [CrossRef] [Google Scholar]

24. Pereira D.S.M., Cardoso B.D., Rodrigues A.R.O., Amorim C.O., Amaral V.S., Almeida B.G., Queiroz M.-J., Martinho O., Baltazar F., Calhelha R.C. Магнитолипосомы, содержащие наночастицы феррита кальция, для применения в терапии рака молочной железы. Фармацевтика. 2019;11:477. doi: 10.3390/фармацевтика11090477. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Изготовление CaFe 2 O 4 /MgFe 2 O 4 объемный гетеропереход для улучшенного фотокатализа в видимом свете. хим. Комм. 2009; 39: 5889–5891. [PubMed] [Google Scholar]

26. Rodríguez-Carvajal J. Последние достижения в определении магнитной структуры с помощью дифракции нейтронов на порошке. физ. Б Конденс. Иметь значение. 1993; 192: 55–69. doi: 10.1016/0921-4526(93)

-I. [CrossRef] [Google Scholar]. Разработка многофункциональных липосом, содержащих магнитные/плазмонные наночастицы ядра/оболочки MnFe₂O₄/Au. Фармацевтика. 2019;11:10. doi: 10.3390/фармацевтика11010010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Питшке В., Герман Х., Маттерн Н. Влияние шероховатости поверхности на интенсивность дифрагированного рентгеновского излучения в геометрии Брэгга–Брентано и его влияние на определение структуры с помощью анализа Ритвельда. Порошок Дифф. 1993; 8: 74–83. doi: 10.1017/S0885715600017875. [CrossRef] [Google Scholar]

29. Бамзай К.К., Кур Г., Каур Б., Кулкарни С.Д. Получение, структурно-магнитные свойства кальцийзамещенного феррита магния состава MgCa х Fe 2-х О 4 ( х = 0,00, 0,01, 0,03, 0,05, 0,07) J. Mater. 2014;2014:184340. дои: 10.1155/2014/184340. [CrossRef] [Google Scholar]

30. Стэнли К.Дж. Оксидные магнитные материалы. Кларендон Пресс; Оксфорд, Великобритания: 1972. [Google Scholar]

31. Ханна Л., Верма Н.К. Синтез, характеристика и исследование цитотоксичности in vitro наночастиц феррита кальция. Матер. науч. Полуконд. Процесс. 2013; 16:1842–1848. doi: 10.1016/j.mssp.2013.07.016. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

32. Каваниши М., Ого С., Икемото М., Тоцука Ю., Ишино К., Вакабаяси К., Яги Т. Генотоксичность и продукция активных форм кислорода, индуцированная наночастицами магнетита в клетках млекопитающих. Дж. Токсикол. науч. 2013; 38: 503–511. doi: 10.2131/jts.38.503. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Liu G., Gao J., Ai H., Chen X. Применение и потенциальная токсичность наночастиц магнитного оксида железа. Небольшой. 2013; 9: 1533–1545. doi: 10.1002/smll.201201531. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

34. Виддрат М., Кумари М., Томпа Э., Посфаи М., Хирт А.М., Фавр Д. Сохранение полной функциональности наночастиц: длительное хранение и изменение магнетита. хим. Плюс. хим. 2014;79:1225–1233. doi: 10.1002/cplu.201402032. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Zhang S., Niu H., Zhang Y., Liu J., Shia Y., Zhang X., Cai Y. Биосовместимое фосфатидилхолиновое двухслойное покрытие о магнитных наночастицах и их применении для извлечения ряда полициклических ароматических углеводородов из проб воды и молока из окружающей среды. Ж. Хроматогр. А. 2012; 1238:38–45. doi: 10.1016/j.chroma.2012.03.056. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

36. Родригес А. Р., Алмейда Б.Г., Родригес Х.М., Кейрос М.-Х.Р.П., Калхелья Р.К., Феррейра И.К.Ф.Р., Пирес А., Перейра А.М., Араужо Х.П., Коутиньо П.Дж.Г., и др. Магнитолипосомы как носители перспективных противоопухолевых тиено[3,2- b ]пиридин-7-ариламинов: фотофизические и биологические исследования. RSC Adv. 2017;7:15352–15361. doi: 10.1039/C7RA00447H. [CrossRef] [Google Scholar]

37. Illés E., Szekeres M., Kupcsik E., Tóth I.Y., Farkas K., Jedlovszky-Hajdú A., Tombácz E. ПЭГилирование наночастиц ядра-оболочки с поверхностным покрытием магнетита для биомедицинского применения . Коллоидный прибой. физ. англ. Асп. 2014;460:429–440. [Google Scholar]

38. Nuytten N., Hakimhashemi M., Ysenbaert T., Defour L., Trekker J., Soenen S.J., Van der Meeren P., Cuyper M. Пегилированные липиды препятствуют латеральной диффузии адсорбированных белков при поверхность (магнето)липосом. Коллоидный прибой. Б Биоинтерфейсы. 2010; 80: 227–231. doi: 10.1016/j.colsurfb.2010.06.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Estelrich J., Busquets M.A., Morán M.C. Влияние ПЭГилирования на магнитолипосомы, нацеленные на лиганд: упущенная цель. Ас Омега. 2017;2:6544–6555. doi: 10.1021/acsomega.7b00778. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Лиде Д.Р. Справочник CRC по химии и физике. 89-е изд. CRC Press/Тейлор и Фрэнсис; Бока-Ратон, Флорида, США: 2009. [Google Scholar]

41. Валер Б. Принципы и приложения молекулярной флуоресценции. Wiley-ВЧ; Weinheim, Germany: 2002. [Google Scholar]

42. Исраэлахвили Дж.Н., Марселя С., Хорн Р.Г. Физические принципы организации мембран. Q. Преподобный Биофиз. 1980; 13: 121–200. doi: 10.1017/S0033583500001645. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

43. Келл Д.Б., Харрис К.М. О диэлектрически наблюдаемых последствиях диффузионного движения липидов и белков в мембранах. 1. Теория и обзор. Евро. Биофиз. Дж. 1985; 12: 181–197. doi: 10.1007/BF00253845. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Tamba Y., Terashima H. , Yamazaki M. Метод мембранной фильтрации для очистки гигантских однослойных везикул. хим. физ. Липиды. 2011; 164:351–358. doi: 10.1016/j.chemphyslip.2011.04.003. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

45. Tanaka T., Tamba Y., Masum S.M., Yamashita Y., Yamazaki M. La 3+ и Gd 3+ индуцируют изменение формы гигантских однослойных везикул фосфатидилхолина. Биохим. Биофиз. Акта. 2002; 1564: 173–182. doi: 10.1016/S0005-2736(02)00444-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Lentz B.R. Текучесть мембран, определяемая зондами с дифенилгексатриеном. хим. физ. Липиды. 1989; 50: 171–190. doi: 10.1016/0009-3084(89)

-2. [CrossRef] [Академия Google]

47. Эрво А., Тхань Н.Т.К. Терапевтические средства на основе магнитных наночастиц для термохимиотерапевтического лечения рака. Наномасштаб. 2014;6:11553–11573. doi: 10.1039/C4NR03482A. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Curtis H., Barnes N.S. Биология. 5-е изд. Стоит Издатели; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 1989. [Google Scholar]

49. Tilley L., Thulborn K.R., Sawyer W.H. Оценка градиента текучести липидного бислоя по набору n -(9-антроилокси)жирных кислот ( n = 2, 6, 9, 12, 16) J. Biol. хим. 1979; 254: 2592–2594. [PubMed] [Google Scholar]

50. Bahri M.A., Heyne B.J., Hans P., Seret AE, Mouithys-Mickalad A.A., Hoebeke MD. Количественная оценка эффекта микровязкости и текучести липидного бислоя, вызванного пропофолом. Биофиз. хим. 2005; 114:53–61. doi: 10.1016/j.bpc.2004.11.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Рейни Н.Е., Мустафа А., Шарик А., Николя Г., Сюро Ф., Пети П.Х. Хелатирование железа куркумином подавляет как индуцированную куркумином аутофагию, так и гибель клеток вместе с неопластической трансформацией перегрузки железом. Сотовая смерть Discov. 2019;5:150. doi: 10.1038/s41420-019-0234-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Muela A., Munoz D., Martín-Rodríguez R., Orue I., Garaio E., Cerio A.A. D., Alonso J., García J.A. Оптимальные параметры гипертермического лечения с использованием биоминерализованных наночастиц магнетита: теоретический и экспериментальный подход. Дж. Физ. хим. С. 2016; 120:24437–24448. doi: 10.1021/acs.jpcc.6b07321. [CrossRef] [Google Scholar]

53. Dash S., Murthy P.N., Nath L., Chowdhury P. Кинетическое моделирование высвобождения лекарств из контролируемых систем доставки лекарств. Акта Пол. фарм. 2010;67:217–223. [PubMed] [Академия Google]

54. Ghitman J., Stan R., Ghebaur A., ​​Cecoltan S., Vasile E., Iovu H. Новые PEG-модифицированные гибридные PLGA-растительные масла наноструктурированные носители для улучшения характеристик доставки индометацина. Полимеры. 2018;10:579. doi: 10.3390/polym10060579. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Кини С., Бахадур Д., Панда Д. Механизм противораковой активности наночастиц, нагруженных беномилом, в раковых клетках с множественной лекарственной устойчивостью. Дж. Биомед. нанотехнологии. 2015; 11: 877–889.. doi: 10.1166/jbn.2015.1998. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Джой М., Айенгар С., Чакраборти. Дж., Гош С. Слоистый двойной гидроксид с использованием гидротермальной обработки: эволюция морфологии, интеркаляция и кинетика высвобождения диклофенака натрия. Фронт. Матер. науч. 2017; 11: 395–408. doi: 10.1007/s11706-017-0400-1. [CrossRef] [Google Scholar]

57. Коста П., Лобо Дж.М.С. Моделирование и сравнение профилей растворения. Евро. Дж. Фарм. науч. 2001; 13: 123–133. дои: 10.1016/S0928-0987(01)00095-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Бацри С., Корн Э.Д. Однослойные липосомы, приготовленные без обработки ультразвуком. Биохим. Биофиз. Акта. 1973; 298:1015–1019. doi: 10.1016/0005-2736(73)90408-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Кремер Дж.М.Х., Ван дер Эскер М.В., Патмаманохаран С., Вирсема П.Х. Везикулы переменного диаметра готовят модифицированным инъекционным методом. Биохимия. 1977; 16: 3932–3935.