Содержание
Анализ воды | Филиал ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в городе Москве» в ЗАО г. Москвы
Анализ воды по санитарно-химическим и микробиологическим показателям проводится в ИЛЦ филиала по адресу:
ул. Вересаева, дом 15.
Консультации:
(495) 443-14-19, (495) 443-78-18 – санитарно-гигиеническая лаборатория
(495) 443-14-18, (495) 443-49-04 – микробиологическая лаборатория
Анализ воды позволяет узнать качество воды, удостовериться в чистоте воды и пригодности воды для питья, умывания, ежедневного применения, эксплуатации бытовой техники и сантехники.
Прием образцов (проб) на лабораторные исследования осуществляется только после предоплаты работ, либо при наличии гарантийного письма.
В лабораториях филиала анализ воды проводится по основным показателям:
Санитарно-гигиенические показатели
| № п/п | Наименование показателя |
| Холодная вода централизованного водоснабжения: | |
1. | Органолептика:запах, привкус |
| 2. | Цветность |
| 3. | Мутность по формазину |
| 4. | Водородный показатель |
| 5. | Окисляемость пермангантаная |
| 6. | Аммиак и ионы аммония (суммарно) |
| 7. | Нитриты |
| 8. | Железо общее |
| 9. | Хлор остаточный связанный |
| 10. | Хлороформ(трихлометан) |
| 11. | Бромоформ(трибромметан) |
| 12. | Четыреххлористый углерож(тетрахлорметан) |
| 13. | Дибромхлорметан |
14. | Дихлорбромметан |
| 15. | Алюминий |
| 16. | Хром общий |
| 17. | Цветность |
| 18. | Свинец |
| 19. | Мышьяк |
| Горячая вода централизованного водоснабжения: | |
| 21. | Органолептика:запах, привкус |
| 22. | Цветность |
| 23. | Мутность по Формазину |
| 24. | Водородный показатель |
| 25. | Железо общее |
| 26. | Алюминий |
| 27. | Полифосфаты |
28. | Хром общий |
| 29. | Кадмий |
| 30. | Свинец |
| 31. | Мышьяк |
| 32. | Никель |
| 33. | Цинк |
| 34. | Сероводород |
| 35. | Хлороформ( трихлометан) |
| Вода централизованного водоснабжения(родники, колодцы, артскважины): | |
| 1. | Органолептика:запах, привкус |
| 2. | Цветность |
| 3. | Мутность по формазину |
| 4. | Водородный показатель |
| 5. | Окисляемость пермангантаная |
6. | Аммиак и ионы аммония (суммарно) |
| 7. | Нитриты |
| 8. | Нитраты |
| 9. | Железо общее |
| 10. | Фториды |
| 11. | Сульфаты |
| 12. | Хлориды |
| 13. | Фосфаты |
| 14. | Сероводород и сульфиды |
| 15. | Марганец |
| 16. | Стронций |
| Вода, расфасованная в емкости, вода из кулера: | |
| 1. | Органолептика:запах, привкус |
| 2. | Цветность |
3. | Мутность по формазину |
| 4. | Водородный показатель |
| 5. | Общая минерализация(сухой остаток) |
| 6. | Жесткость общая |
| 7. | Щелочность общая |
| 8. | Фториды |
| 9. | Нитраты |
| 10. | Хлориды |
| 11. | Сульфаты |
| 12. | Гидрокорбонаты |
| 13. | Окисляемость пермангантаная |
| 14. | Мышьяк |
| 15. | Свинец |
| 16. | Кадмий |
17. | Калий |
| 18. | Натрий |
| 19. | Кальций |
| 20. | Магний |
| 21. | Серебро |
| Вода бассейнов: | |
| 1. | Запах |
| 2. | Мутность по формазину |
| 3. | Цветность |
| 4. | Хлориды |
| 5. | Остаточный свободный хлор |
| 6. | Связанный хлор |
| 7. | Остаточный общий хлор |
| 8. | Хлороформ |
| 9. | Формальдегид |
10. | Водородный показатель (pH) |
| 11. | Азот аммонийный |
| 12. | Перманганатная окисляемость |
| Вода открытых водоёмов: | |
| 1. | Органолептика:запах, окраска, плавающие примеси |
| 2. | Растворённый кислород |
| 3. | Взвешенные вещества |
| 4. | Сухой остаток |
| 5. | Водородный показатель |
| 6. | БПК 5 |
| 7. | ХПК |
| 8. | Аммиак и ионы аммония(суммарно) |
| 9. | Нитриты |
| 10. | Нитраты |
11. | Хлориды |
| 12. | Сульфаты |
| 13. | Нефтепродукты |
| 14. | АПАВ(аниоктивные поверхностные вещества) |
| 15. | Кадмий |
| 16. | Хром общий |
| 17. | Никель |
| 18. | Свинец |
| 19. | Медь |
| 20. | Цинк |
| Сточна вода ливнестоков: | |
| 1. | Органолептика:запах,прозрачность, цвет, муть, осадок |
| 2. | Взвешенные вещества |
| 3. | Сухой остаток |
4. | Водородный показатель |
| 5. | БПК5 |
| 6. | ХПК |
| 7. | Аммиак и ионы аммония(суммарно) |
| 8. | Нитриты |
| 9. | Нитраты |
| 10. | Хлориды |
| 11. | Сульфаты |
| 12. | Железо общее |
| 13. | Нефтепродукты |
| 14. | АПАВ(аниоктивные поверхностные вещества) |
| 15. | Сероводород и сульфиды |
| 16. | Кадмий |
| 17. | Хром общий |
| 18. | Никель |
19. | Свинец |
| 20. | Медь |
| 21. | Цинк |
| Техническая вода(оборотная вода на автомойке): | |
| 1. | БПК5 |
| 2. | ХПК |
| 3. | Нефтепродукты |
| 4. | Взвешенные вещества |
| 5. | Водородный показатель |
| Вода дистиллированная: | |
| 1. | Остаток после выпаривания |
| 2. | Аммиак и аммонийные соли |
| 3. | Нитраты |
| 4. | Сульфаты |
5. | Хлориды |
| 6. | Железо |
| 7. | Кальций |
| 8. | Медь |
| 9. | Свинец |
| 10. | Цинк |
| 11. | Вещества, восстаналивающие KMnO4 |
| 12. | pH |
| 13. | Удельная электрическая проводимость |
Микробиологические показатели
| № п/п | Наименование показателя |
| 2.0 | Вода |
| 2.1. | Вода систем централизованного питьевого водоснабжения, в т.ч. горячего водоснабжения: |
2. 1.1 | Общее микробное число |
| 2.1.2 | Общие колиформные бактерии, Термотолернатные колиформные бактерии |
| 2.1.3. | E.Coli |
| 2.1.4. | Энтрерококки |
| 2.1.5. | Колифаги |
| Дополнительные исследования: | |
| 2.1.6 | Возбудители кишечных инфекций |
| 2.1.7. | Pseudomonas aeruginosa |
| 2.1.8. | Legionella pneumophila |
| 2.2 | Вода открытых водоёмов, сточная: |
| 2.2.1 | Общие колиформные бактерии, Термотолернатные колиформные бактерии |
| 2.2.2 | Коли-фаги(без обогащения) |
| 2.2.3. | E.Coli |
| 2.2.4. | Энтерококки |
| 2.2.5. | Возбудители кишечных инфекций(Salmonella spp. ) |
| 2.3. | Вода плавательных бассейнов: |
| 2.3.1 | Общие колиформные бактерии, Термотолернатные колиформные бактерии |
| 2.3.2. | Патогенный стафилококк(S.aureus) |
| 2.3.3. | Коли -фаги(с обогащением) |
| 2.3.4. | E.Coli |
| 2.3.5. | Энтрерококки |
| 2.3.6. | Pseudomonas aeruginosa |
| Дополнительные исследования: | |
| 2.3.7. | Возбудители кишечных инфекций |
| 2.3.8. | Legionella pneumophila |
| 2.3.9. | Candida albicans |
| 2.4. | Санитарно-паразитологические исследования: |
| 2.4.1. | Исследование питьевой воды, плавательных бассейнов на яйца, личинки гельминтов и цисты лямблий |
2. 4.2. | Исследование воды открытых водоёмов на яйца гельминтов, цисты патогенных кишечных простейших |
| 2.4.3. | Исследование питьевой воды расфасованной в емкости на яйца гельминтов, цисты лямблий и ооцисты криптоспоридий |
| 2.4.4. | Исследование сточной воды на яйца гельминтов и цисты кишечных простейших |
| 2.4.5. | Исследование донных отложений и осадка сточных вод на яйца гельминтов и цисты кишечных простейших |
| 2.5 | Исследование на особо-опасные инфекции: |
| 2.5.1. | Вода открытых водоёмов, сточная вода на холеру |
| 2.5.2. | Вода централизованного водоснабжения, в том числе горячая на легионеллез – бактериол, метод |
Сдать тест ПЦР на коронавирус Covid-19 в Минеральных Водах
Метод определения
ПЦР с детекцией в режиме реального времени.
Тест-система «Вектор-Бест», Россия.
Определение РНК вируса SARS-CoV-2 (все виды известных штаммов, включая Дельта, Омикрон и его вариант «Стелс-омикрон»)
Исследуемый материал
Мазок со слизистой носоглотки и/или ротоглотки
Стоимость взятия биоматериала уточняйте в медицинском офисе
Для проведения исследования в медицинских офисах необходимо предъявить СНИЛС и документ удостоверяющий личность.
В случае получения положительного или сомнительного результата на COVID-19 и при необходимости проведения подтверждающего тестирования образец биоматериала может быть направлен в уполномоченную референс-лабораторию в соответствии с СП 3.1.3597-20, в связи с чем установленный срок выполнения исследования может быть увеличен.
Синонимы: Ковид-19; Новая коронавирусная инфекция; РНК нового коронавируса; РНК SARS-CoV-2 в мазке со слизистой носоглотки и/или ротоглотки.
Comprehensive laboratory diagnosis of coronavirus COVID-19; New Coronavirus RNA in nasopharyngeal and/or oropharyngeal smear.
Краткая информация об инфекции, вызываемой вирусом SARS-CoV-2 (COVID-19)
SARS-CoV-2 относится к большому семейству РНК-содержащих вирусов – коронавирусов (лат. Coronaviridae), вызывающих респираторные заболевания. В настоящее время известно о циркуляции среди населения четырех видов коронавирусов (HCoV-229E, -OC43, -NL63 и -HKU1), которые круглогодично присутствуют в структуре ОРВИ и, как правило, вызывают поражение верхних дыхательных путей легкой и средней тяжести. К семейству коронавирусов также относятся опасные вирусы SARS-CoV и MERS-CoV, вызывающие тяжелый острый респираторный синдром и ближневосточный респираторный синдром, соответственно.
Основным источником при инфицировании вирусом SARS-CoV-2 является больной человек, в том числе находящийся в инкубационном периоде заболевания. В настоящее время считается, что инфекция передается воздушно-капельным (при кашле, чихании, разговоре), воздушно-пылевым и контактным путями.
При этом факторами передачи могут быть воздух, пищевые продукты и предметы обихода, контаминированные SARS-CoV-2.
Инкубационный период составляет от 2 до 14 суток.
У большинства людей (до 80% случаев) инфекция протекает бессимптомно или в легкой форме, у 10-15% – в среднетяжелой форме, крайне тяжелое течение отмечается у 2-5% инфицированных.
Диагноз заболевания, которому присвоено название COVID-19 и причиной которого является вирус SARS-CoV-2, устанавливается на основании клинического обследования, данных эпидемиологического анамнеза и результатов лабораторных исследований.
Для заболевания характерно наличие клинических проявлений острой респираторной вирусной инфекции. Основными симптомами являются повышение температуры, кашель сухой или с небольшим количеством мокроты, одышка, миалгия и утомление, ощущение заложенности в грудной клетке. На раннем этапе заболевания COVID-19 возможны диарея, тошнота, рвота.
Различают легкую, среднюю и тяжелую формы инфекции SARS-CoV-2. Тяжелая форма заболевания протекает как пневмония с острой дыхательной недостаточностью, острый респираторный дистресс-синдром (ОРДС), сепсис.
Тестирование методом ПЦР в режиме реального времени применяют для специфической лабораторной диагностики, подтверждающей инфекцию SARS-CoV-2.
Аналитические характеристики теста ПЦР на «Коронавирус SARS-CoV-2, определение РНК, кач., в мазке со слизистой носоглотки и/или ротоглотки»
Аналитическая чувствительность
1×103 копий/мл исходного образца.
Аналитическая специфичность
Перекрестных реакций с вирусами (грипп А и В, парагрипп, аденовирусная инфекция, респираторно-синцитиальная инфекция, метапневмовирусная инфекция, риновирусная инфекция и коронавирусная инфекция человека, вызванная HCoV-NL63, HCoV-OC43, HCoV-229E, HCoV-HKU1) и микроорганизмами (Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus) не обнаружено.
POWER OF STEALTH — Stealth
В МАЕ 2014 произошел наш первый крупный прорыв в нашей ТЕХНОЛОГИИ STEALTH. После бесчисленных попыток и множества неудач мы создали самый мощный в мире антиоксидант в настоящий момент «Назад в будущее». Цепочка сгруппированных молекул воды была создана с помощью — или + колебаний потенциала восстановления кислорода и (корпоративная тайна) использования недавно разработанных прикладных наук. Эта технология формировала глубокие скопления молекул воды за счет отрицательных колебаний ОВП. Потенциальная энергия, генерируемая манипуляциями в мВ, увеличивала молекулярные уровни в более высоких плотностях, наполняя их активными кислородными связующими связями.
Хотите знать, как это работает?
Этап 1: Очистка
ПОЛОСА
Фильтрация STEALTH не имеет себе равных. Из-за загрязнения воды из муниципальных источников для борьбы с токсичностью водопроводной воды требуются как минимум 2-ступенчатые фильтры.
STEALTH использует 3-ступенчатую фильтрацию. Используя 3 суперфильтра, мы удаляем все следы химических веществ, тяжелых металлов, микропластика и токсинов. Эти токсины включают хлор, хлорамин, щелочь, фтор, гербициды, свинец, ртуть, метил-трет-бутиловый эфир, нитраты, перхлораты, фармацевтические препараты и многое другое!
BYPASS
Что отличает STEALTH Filtration от других, так это то, что, отфильтровывая загрязняющие вещества, он одновременно позволяет естественным полезным исходным минералам проходить и оставаться в воде в органическом виде. Некоторыми из этих минералов являются магний, калий и кальций, которые связаны со многими доказанными преимуществами для здоровья. После этого шага STEALTH становится на 100% органическим; таким, каким его задумала природа. STEALTH Вода не содержит химикатов, консервантов и токсинов. Тело может поглощать воду и минералы STEALTH с гораздо большей скоростью.
Шаг 2: Реконструкция
ГИДРАТАЦИЯ СОВЕРШЕННО
Чистая, отфильтрованная СТЕЛС-ВОДА затем поступает в электрически заряженные камеры платиновых и титановых пластин.
Вот где происходит волшебство! Мы продолжаем удалять даже невидимые, нефильтруемые загрязнители воды, используя милливольты электричества, чтобы нейтрализовать их. Мы создаем линию сброса воды, чтобы устранить неприятные вещества, и линию воды высокой плотности, наполненную активным водородом с глубокими кластерами.
С НАГНЕТАТЕЛЕМ
Открывая этот запатентованный последний шаг, мы обнаружили самый мощный в мире антиоксидант. Молекулы воды конденсируются и сгруппированы, поэтому они быстрее проникают в ваши клетки. Каждый стакан STEALTH WATER содержит миллионы антивозрастных антиоксидантов, которые нейтрализуют вредные свободные радикалы. STEALTH WATER выводит из организма вредные токсины, кислоты и отходы. Почему бы не заправить свое тело лучшим топливом?
STEALTH Исследования показали…
Насколько эффективна STEALTH DETOX WATER? Загрузите наше исследование контролируемого курения, чтобы увидеть, как STEALTH удаляет никотин, котинин и ТГК из человеческого организма во время курения в прямом эфире.
Вы будете потрясены силой STEALTH WATER. Удаление токсинов с такой скоростью никогда не регистрировалось с научной точки зрения до этого исследования. Пейте STEALTH WATER и ничего больше для достижения непревзойденных результатов
Что делает STEALTH лучшим?
Магнитолипосомы Stealth на основе замещенных кальцием наночастиц феррита магния для транспортировки и высвобождения куркумина
1. Гоэл А., Куннумаккара А.Б., Аггарвал Б.Б. Куркумин как «лекарство»: от кухни до клиники. Биохим. фарм. 2008; 75: 787–809. doi: 10.1016/j.bcp.2007.08.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Рингман Дж. М., Фраучи С. А., Коул Г. М., Мастерман Д. Л., Каммингс Дж. Л. Потенциальная роль куркумина из специй карри при болезни Альцгеймера. Курс. Альцгеймер Res.
2005;2:131–136. doi: 10.2174/1567205053585882. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Махешвари Р.К., Сингх А.К., Гаддипати Дж., Шримал Р.К. Множественная биологическая активность куркумина: краткий обзор. Жизнь наук. 2006; 78: 2081–2087. doi: 10.1016/j.lfs.2005.12.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Trujillo J., Chirino Y.I., Molina-Jijón E., Andérica-Romero A.C., Tapia E., Pedraza-Chaverrí J. Ренопротекторный эффект антиоксиданта куркумина: недавние результаты . Редокс Биол. 2013; 1: 448–456. doi: 10.1016/j.redox.2013.09.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. Ответное письмо агентства Уведомление GRAS № Grn 000460. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США; White Oak, MD, USA: 2013. [Google Scholar]
6. Heger M., van Golen R.F., Broekgaarden M., Michel M.C. Молекулярная основа фармакокинетики и фармакодинамики куркумина и его метаболитов в отношении рака.
фарм. 2013; 66: 222–307. doi: 10.1124/пр.110.004044. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
7. Куриен Б.Т., Сингх А., Мацумото Х., Скофилд Р.Х. Повышение растворимости и фармакологической эффективности куркумина путем термической обработки. Анализ наркотиков Dev. Технол. 2007; 5: 567–576. doi: 10.1089/adt.2007.064. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. Liang G., Shao L., Wang Y., Zhao C., Chu Y., Xiao J., Zhao Y., Li X., Yang S. Exploration и синтез аналогов куркумина с улучшенной структурной стабильностью как in vitro, так и in vivo в качестве цитотоксических агентов. биоорг. Мед. хим. 2009;17:2623–2631. doi: 10.1016/j.bmc.2008.10.044. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
9. Danhier F., Feron O., Préat V. Использование микроокружения опухоли: пассивное и активное нацеливание на опухоль наноносителей для доставки противоопухолевых препаратов. Дж. Контроль. отн. 2010; 148:135–146. doi: 10.1016/j.jconrel.2010.08.027. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10.
Савант Р.Р., Торчилин В.П. Проблемы разработки таргетной липосомальной терапии. Аапс Дж. 2012; 14:303–315. doi: 10.1208/s12248-012-9330-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Жьер Р. Магнетит в организме человека. ПНАС. 2016;113:11986–11987. doi: 10.1073/pnas.1613349113. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Ван З.Л., Лю Ю., Чжан З. Справочник по нанофазным и наноструктурным материалам. Том 3 Kluwer Academic/Plenum; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 2003. [Google Scholar]
13. Шарма Р., Такур П., Шарма П. Mn 2+ ферритовые наночастицы, легированные Mg-Zn, для применения в микроволновых устройствах. IEEE Electron Device Lett. 2018;39: 901–904. doi: 10.1109/LED.2018.2829926. [CrossRef] [Google Scholar]
14. Амария С.Н., Долиа А.С., Прасад П.К., Шарма С.П., Парик М.С., Кумар Д.С. Структурное и магнитное поведение CaFe 2 O 4 в зависимости от размера. Курс. заявл. физ.
2013; 13:830–835. doi: 10.1016/j.cap.2012.12.009. [CrossRef] [Google Scholar]
15. Сальдивар-Рамирес М.М.Г., Санчес-Торрес К.Г., Кортес-Эрнандес Д.А., Эскобедо-Бокардо Х.К., Альманса-Роблес Х.М., Ларсон А., Резендиз-Эрнандес П.Дж., Акуна И.О.Гутьерр. Исследование эффективности наноразмерного магнетита и смешанных ферритов в магнитной гипертермии. Дж. Матер. науч. Матер. Электрон. 2014;25:2229–2236. doi: 10.1007/s10856-014-5187-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Шепелак В., Баабе Д., Минерт Д., Литтерст Ф.Дж., Беккер К.Д. Повышенная намагниченность в нанокристаллическом высокоэнергетическом измельченном MgFe 2 O 4 . Скр. Матер. 2003; 48: 961–966. doi: 10.1016/S1359-6462(02)00600-0. [CrossRef] [Google Scholar]
17. Гисмелсид А.М., Мохаммед К.А., Видаталла Х.М., Аль-Равас А.Д., Эльзаин М.Е., Юсиф А.А. Структура и магнитные свойства Zn x Mg 1-x Fe 2 O 4 ферриты. Дж. Физ. конф. сер.
2010;217:012138. doi: 10.1088/1742-6596/217/1/012138. [CrossRef] [Google Scholar]
18. Мазен С.А., Мансур С.Ф., Заки Х.М. Некоторые физические и магнитные свойства феррита Mg-Zn. Кристалл. Рез. Технол. 2003; 38: 471–478. doi: 10.1002/crat.200310059. [CrossRef] [Google Scholar]
19. Van Nong H., Hung L.X., Thang P.N., Chinh V.D., Vu L.V., Dung P.T., Van Trung T., Nga P.T. Изготовление и вибрационная характеристика куркумина, извлеченного из корневищ куркумы (Curcuma longa) северного Вьетнама. Спрингерплюс. 2016;22:1147. doi: 10.1186/s40064-016-2812-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Барик К.С., Экта Э., Гавали С.Л., Саркар А., Кунвар А., Приядарсини К.Л., Хассан П.А. Плюроник стабилизированный Fe 3 O 4 магнитные наночастицы для внутриклеточной доставки куркумина. RSC Adv. 2016;6:98674–98681. doi: 10.1039/C6RA21207G. [CrossRef] [Google Scholar]
21. Приядарсини К.И. Фотофизика, фотохимия и фотобиология куркумина: исследования органических растворов, биомиметиков и живых клеток.
Дж. Фотохим. Фотобиол. C Фотохим. Версия 2009 г.;10:81–95. doi: 10.1016/j.jphotochemrev.2009.05.001. [CrossRef] [Google Scholar]
22. Cardoso B.D., Rio ISR, Rodrigues A.R.O., Fernandes FCT, Almeida B.G., Pires A., Pereira A.M., Araujo J.P., Castanheira E.M.S., Coutinho PJG. Магнитолипосомы, содержащие наночастицы феррита магния, в качестве наноносителей для модельного препарата куркумина. Р. Соц. Открытая наука. 2018;5:181017. doi: 10.1098/rsos.181017. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Jasim F., Ali. F. Новый и быстрый метод спектрофлуориметрического определения куркумина в куркуминовых специях и ароматизаторах. Микрохим. Дж. 1988;38:106–110. doi: 10.1016/0026-265X(88)
-2. [CrossRef] [Google Scholar]
24. Pereira D.S.M., Cardoso B.D., Rodrigues A.R.O., Amorim C.O., Amaral V.S., Almeida B.G., Queiroz M.-J., Martinho O., Baltazar F., Calhelha R.C. Магнитолипосомы, содержащие наночастицы феррита кальция, для применения в терапии рака молочной железы.
Фармацевтика. 2019;11:477. doi: 10.3390/фармацевтика11090477. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Изготовление CaFe 2 O 4 /MgFe 2 O 4 объемный гетеропереход для улучшенного фотокатализа в видимом свете. хим. Комм. 2009; 39: 5889–5891. [PubMed] [Google Scholar]
26. Rodríguez-Carvajal J. Последние достижения в определении магнитной структуры с помощью дифракции нейтронов на порошке. физ. Б Конденс. Иметь значение. 1993; 192: 55–69. doi: 10.1016/0921-4526(93)
-I. [CrossRef] [Google Scholar]. Разработка многофункциональных липосом, содержащих магнитные/плазмонные наночастицы ядра/оболочки MnFe₂O₄/Au. Фармацевтика. 2019;11:10. doi: 10.3390/фармацевтика11010010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Питшке В., Герман Х., Маттерн Н. Влияние шероховатости поверхности на интенсивность дифрагированного рентгеновского излучения в геометрии Брэгга–Брентано и его влияние на определение структуры с помощью анализа Ритвельда.
Порошок Дифф. 1993; 8: 74–83. doi: 10.1017/S0885715600017875. [CrossRef] [Google Scholar]
29. Бамзай К.К., Кур Г., Каур Б., Кулкарни С.Д. Получение, структурно-магнитные свойства кальцийзамещенного феррита магния состава MgCa х Fe 2-х О 4 ( х = 0,00, 0,01, 0,03, 0,05, 0,07) J. Mater. 2014;2014:184340. дои: 10.1155/2014/184340. [CrossRef] [Google Scholar]
30. Стэнли К.Дж. Оксидные магнитные материалы. Кларендон Пресс; Оксфорд, Великобритания: 1972. [Google Scholar]
31. Ханна Л., Верма Н.К. Синтез, характеристика и исследование цитотоксичности in vitro наночастиц феррита кальция. Матер. науч. Полуконд. Процесс. 2013; 16:1842–1848. doi: 10.1016/j.mssp.2013.07.016. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
32. Каваниши М., Ого С., Икемото М., Тоцука Ю., Ишино К., Вакабаяси К., Яги Т. Генотоксичность и продукция активных форм кислорода, индуцированная наночастицами магнетита в клетках млекопитающих. Дж. Токсикол.
науч. 2013; 38: 503–511. doi: 10.2131/jts.38.503. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Liu G., Gao J., Ai H., Chen X. Применение и потенциальная токсичность наночастиц магнитного оксида железа. Небольшой. 2013; 9: 1533–1545. doi: 10.1002/smll.201201531. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
34. Виддрат М., Кумари М., Томпа Э., Посфаи М., Хирт А.М., Фавр Д. Сохранение полной функциональности наночастиц: длительное хранение и изменение магнетита. хим. Плюс. хим. 2014;79:1225–1233. doi: 10.1002/cplu.201402032. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Zhang S., Niu H., Zhang Y., Liu J., Shia Y., Zhang X., Cai Y. Биосовместимое фосфатидилхолиновое двухслойное покрытие о магнитных наночастицах и их применении для извлечения ряда полициклических ароматических углеводородов из проб воды и молока из окружающей среды. Ж. Хроматогр. А. 2012; 1238:38–45. doi: 10.1016/j.chroma.2012.03.056. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
36. Родригес А.
Р., Алмейда Б.Г., Родригес Х.М., Кейрос М.-Х.Р.П., Калхелья Р.К., Феррейра И.К.Ф.Р., Пирес А., Перейра А.М., Араужо Х.П., Коутиньо П.Дж.Г., и др. Магнитолипосомы как носители перспективных противоопухолевых тиено[3,2- b ]пиридин-7-ариламинов: фотофизические и биологические исследования. RSC Adv. 2017;7:15352–15361. doi: 10.1039/C7RA00447H. [CrossRef] [Google Scholar]
37. Illés E., Szekeres M., Kupcsik E., Tóth I.Y., Farkas K., Jedlovszky-Hajdú A., Tombácz E. ПЭГилирование наночастиц ядра-оболочки с поверхностным покрытием магнетита для биомедицинского применения . Коллоидный прибой. физ. англ. Асп. 2014;460:429–440. [Google Scholar]
38. Nuytten N., Hakimhashemi M., Ysenbaert T., Defour L., Trekker J., Soenen S.J., Van der Meeren P., Cuyper M. Пегилированные липиды препятствуют латеральной диффузии адсорбированных белков при поверхность (магнето)липосом. Коллоидный прибой. Б Биоинтерфейсы. 2010; 80: 227–231. doi: 10.1016/j.colsurfb.2010.06.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39.
Estelrich J., Busquets M.A., Morán M.C. Влияние ПЭГилирования на магнитолипосомы, нацеленные на лиганд: упущенная цель. Ас Омега. 2017;2:6544–6555. doi: 10.1021/acsomega.7b00778. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Лиде Д.Р. Справочник CRC по химии и физике. 89-е изд. CRC Press/Тейлор и Фрэнсис; Бока-Ратон, Флорида, США: 2009. [Google Scholar]
41. Валер Б. Принципы и приложения молекулярной флуоресценции. Wiley-ВЧ; Weinheim, Germany: 2002. [Google Scholar]
42. Исраэлахвили Дж.Н., Марселя С., Хорн Р.Г. Физические принципы организации мембран. Q. Преподобный Биофиз. 1980; 13: 121–200. doi: 10.1017/S0033583500001645. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
43. Келл Д.Б., Харрис К.М. О диэлектрически наблюдаемых последствиях диффузионного движения липидов и белков в мембранах. 1. Теория и обзор. Евро. Биофиз. Дж. 1985; 12: 181–197. doi: 10.1007/BF00253845. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Tamba Y., Terashima H.
, Yamazaki M. Метод мембранной фильтрации для очистки гигантских однослойных везикул. хим. физ. Липиды. 2011; 164:351–358. doi: 10.1016/j.chemphyslip.2011.04.003. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
45. Tanaka T., Tamba Y., Masum S.M., Yamashita Y., Yamazaki M. La 3+ и Gd 3+ индуцируют изменение формы гигантских однослойных везикул фосфатидилхолина. Биохим. Биофиз. Акта. 2002; 1564: 173–182. doi: 10.1016/S0005-2736(02)00444-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Lentz B.R. Текучесть мембран, определяемая зондами с дифенилгексатриеном. хим. физ. Липиды. 1989; 50: 171–190. doi: 10.1016/0009-3084(89)
-2. [CrossRef] [Академия Google]
47. Эрво А., Тхань Н.Т.К. Терапевтические средства на основе магнитных наночастиц для термохимиотерапевтического лечения рака. Наномасштаб. 2014;6:11553–11573. doi: 10.1039/C4NR03482A. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Curtis H., Barnes N.S. Биология. 5-е изд. Стоит Издатели; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 1989.
[Google Scholar]
49. Tilley L., Thulborn K.R., Sawyer W.H. Оценка градиента текучести липидного бислоя по набору n -(9-антроилокси)жирных кислот ( n = 2, 6, 9, 12, 16) J. Biol. хим. 1979; 254: 2592–2594. [PubMed] [Google Scholar]
50. Bahri M.A., Heyne B.J., Hans P., Seret AE, Mouithys-Mickalad A.A., Hoebeke MD. Количественная оценка эффекта микровязкости и текучести липидного бислоя, вызванного пропофолом. Биофиз. хим. 2005; 114:53–61. doi: 10.1016/j.bpc.2004.11.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Рейни Н.Е., Мустафа А., Шарик А., Николя Г., Сюро Ф., Пети П.Х. Хелатирование железа куркумином подавляет как индуцированную куркумином аутофагию, так и гибель клеток вместе с неопластической трансформацией перегрузки железом. Сотовая смерть Discov. 2019;5:150. doi: 10.1038/s41420-019-0234-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Muela A., Munoz D., Martín-Rodríguez R., Orue I., Garaio E., Cerio A.A.
D., Alonso J., García J.A. Оптимальные параметры гипертермического лечения с использованием биоминерализованных наночастиц магнетита: теоретический и экспериментальный подход. Дж. Физ. хим. С. 2016; 120:24437–24448. doi: 10.1021/acs.jpcc.6b07321. [CrossRef] [Google Scholar]
53. Dash S., Murthy P.N., Nath L., Chowdhury P. Кинетическое моделирование высвобождения лекарств из контролируемых систем доставки лекарств. Акта Пол. фарм. 2010;67:217–223. [PubMed] [Академия Google]
54. Ghitman J., Stan R., Ghebaur A., Cecoltan S., Vasile E., Iovu H. Новые PEG-модифицированные гибридные PLGA-растительные масла наноструктурированные носители для улучшения характеристик доставки индометацина. Полимеры. 2018;10:579. doi: 10.3390/polym10060579. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55. Кини С., Бахадур Д., Панда Д. Механизм противораковой активности наночастиц, нагруженных беномилом, в раковых клетках с множественной лекарственной устойчивостью. Дж. Биомед.
нанотехнологии. 2015; 11: 877–889.. doi: 10.1166/jbn.2015.1998. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Джой М., Айенгар С., Чакраборти. Дж., Гош С. Слоистый двойной гидроксид с использованием гидротермальной обработки: эволюция морфологии, интеркаляция и кинетика высвобождения диклофенака натрия. Фронт. Матер. науч. 2017; 11: 395–408. doi: 10.1007/s11706-017-0400-1. [CrossRef] [Google Scholar]
57. Коста П., Лобо Дж.М.С. Моделирование и сравнение профилей растворения. Евро. Дж. Фарм. науч. 2001; 13: 123–133. дои: 10.1016/S0928-0987(01)00095-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Бацри С., Корн Э.Д. Однослойные липосомы, приготовленные без обработки ультразвуком. Биохим. Биофиз. Акта. 1973; 298:1015–1019. doi: 10.1016/0005-2736(73)90408-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Кремер Дж.М.Х., Ван дер Эскер М.В., Патмаманохаран С., Вирсема П.Х. Везикулы переменного диаметра готовят модифицированным инъекционным методом. Биохимия. 1977; 16: 3932–3935.